책소개

지난 2년간 임상미생물학실습을 가르치면서 좀 더 교재다운 교재를 개발할 필요성을 절실히 느낀 가운데 하나씩 준비를 하였다. 물론 훌륭한 교재가 많이 있지만 우리 학생들에게 지나치지 않고 알맞은, 반드시 알아야 할 중요한 부분의 핵심적인 사항, 그리고 처음부터 응용과정의 실습이 아닌 기초부터 심화에 이르기까지 단계적으로 학습을 할 필요성이 있었기에 이 교재를 만든 계기가 되었다.

이 책의 구성요소는 1년간 학생들에게 가르친 그대로의 내용이고 현재의 교재 구성에 대한 만족도와 평가가 좋아 강의내용 그대로 교재구성을 하게 되었다. 또한, 임상병리학과에서는 국가고시라는 면허시험을 치루어야 하기 때문에 그에 필요한 그림과 그것에 대한 설명, 원리와 결과등 충분히 이해하여야 하고 학습해야 하기 때문에 이 교재 한권으로 임상미생물학 이론 및 실기 국가고시를 스스로 준비할 수 있도록 구성하였다.

더욱이 실습 report를 별도로 작성할 필요없이 교재안에서 자유롭게 작성을 할 수 있도록 빈page를 만들었고 부록엔 각 세균에서 가장 중요하고도 핵심적인 사항을 요약을 해놓았기 때문에 언제라도 전체적인 흐름을 알 수 있게 구성되어있다. 차별화된 교재를 만들려고 준비를 하였지만 첫 번째의 결실이라 많은 부족함이 있을 것이다. 이 교재를 학생들과 사용하면서 보완될 사항이 있을것이라 예상하며 좀더 나은 교재가 되기 위해 보완, 수정을하여 2nd edition에는 더 멋진 교재가 될 것으로 확신을한다.

마지막으로 이 교재가 나오기까지 귀한 수고를 해주신 고려의학의 이창용 부장님과 최병진 사장님께 진심이 있는 감사함을 전합니다.

2013년 8월

대구보건대학교 임상병리과

박 철 인

저자 및 역자 소개

박철인

대구보건대학교 임상병리과 교수

김수정

대구보건대학교 임상병리과 교수

목차
CHAPTER 01 임상미생물학실습의 기초
1. 실습제목 • 1
2. 실습개요 • 1
1) 실습 시 주의사항 • 1
2) 균주 보관에 대하여 • 2
3) 임생미생물학실습에 사용하는 각종 기구 • 3
4) 실습보고서 작성 방법 • 4
CHAPTER 02 세균의 형태관찰
1. 실습제목 • 11
2. 실습개요(배경 및 원리) • 11
1) 간단한 미생물의 염색 • 11
3. 실습과정 및 방법 • 13
1) 현미경의 원리 및 작동법 • 13
2) 현미경의 기본구조 • 14
3) 현미경 조작방법 • 14
CHAPTER 03 세균의 염색
1. 실습제목 • 21
2. 실습개요(배경 및 원리) • 21
3. 실험과정 및 방법 • 22
4. 그 밖의 염색법 • 23
1) Negative Staining • 23
2) Acid-Fast Bacillus(AFB) Staining • 23
3) Spore stain • 24
vii
CHAPTER 04 배지만들기 및 Bacterial streaking
1. 실습제목 • 31
2. 실습개요(배경 및 원리) • 31
1) 배지의 종류 • 31
2) 사용에 따른 분류 • 32
3) 주요 배지의 주성분 • 32
4) 주요 배지 • 33
5) 배지와 지시약 • 34
3. 실험과정 및 방법 • 34
1) 실험재료(Materials) • 34
2) 배지 만드는 순서(Procedures) • 34
CHAPTER 05 포도알균(포도상구균-Staphylococcus spp.)과 MRSA 동정
1. 실습제목 • 41
2. 실습개요(배경 및 원리) • 41
1) Staphylococcus aureus • 41
2) Methicillin-Resistant S. aureus(MRSA) • 45
3. 실습과정 및 방법 • 45
1) 실습균주 • 45
2) 실험재료 • 45
3) 실습내용 • 46
CHAPTER 06 사슬알균(연쇄상구균-Streptococcus spp.)의 동정
1. 실습제목 • 55
2. 실습개요(배경 및 원리) • 55
1) Streptococcus pyogenes(Group A Streoptococcus) • 56
2) Streptococcus agalactiae(Group B streptococcus) • 57
3) Streptococcus pneumoniae • 59
4) Viridans group Streptococcus • 60
viii
CHAPTER 07 장알균(Enterococcus) 동정
1. 실습제목 • 67
2. 실습개요(배경 및 원리) • 67
3. 실습과정 및 방법 • 68
1) 담즙 esculin 가수분해시험 • 68
2) 6.5% NaCl resistance test • 69
3) SF(Streptococcus faecalis) 배지 • 69
4) PYR test • 70
CHAPTER 08 Escherichia coli와 E.coli 0157H7의 동정
1. 실습제목 • 75
2. 실습개요(배경 및 원리) • 75
1) 장출혈성 대장균(EHEC Enterohaemorrhagic E. coli) • 75
2) 장병원성대장균(EPEC Enteropathogenic E. coli) • 76
3) 장침투성대장균(EIEC Enteroinvasive E. coli) • 76
4) 장독소원성 대장균(ETEC Enterotoxigenic E. coli) • 76
5) 장흡착성 대장균(EAEC Enteroaggregative E. coli) • 76
3. 실험과정 및 방법 • 77
1) 실습균주 • 77
2) 실습내용 • 77
CHAPTER 09 Salmonella와 Shigella의 동정
1. 실습제목 • 83
2. 실습개요(배경 및 원리) • 83
1) Salmonella • 83
2) Shigella • 84
3. 실습과정 및 방법 • 85
1) 실습균주 • 85
2)실습내용 • 85
ix
CHAPTER 10 Proteus, Morganella 및 Providencia 동정
1. 실습제목 • 91
2. 실습개요(배경 및 원리) • 91
1) P.vulgaris와 P. mirabilis의 차이점 • 92
2) Providencia(P. alcalifaciens) • 92
3) Morganella(M. morganii) • 92
3. 실습과정 및 방법 • 93
1) PAD(phenylalanine deaminase) test(=PPA test) • 93
2) Swarming motility test on BAP • 93
3) Indole test • 93
CHAPTER 11 Triple Sugar-Iron Agar(TSI) Test
1. 실습제목 • 99
2. 실습개요(배경 및 원리) • 99
1) 세균들의 대사활동 • 99
2) TSI agar • 100
3. 실습과정 및 방법. • 101
1) 실습재료 • 101
2) 실습방법 • 101
CHAPTER 12 IMViC test
1. 실습제목 • 109
2. 실습개요(배경 및 원리) • 109
3. 실습과정 및 방법 • 110
1) Indole Production test(인돌생성시험) • 110
2) Methyl Red • 111
3) Voges-Proskauer test • 111
4) Citrate Utilization test(질소이용시험) • 112
5) IMViC tests • 113
x
CHAPTER 13 API kit를 이용한 세균동정
1. 실습제목 • 119
2. 실습개요(배경 및 원리) • 119
3. 실습과정 및 방법 • 120
CHAPTER 14 기초적인 장내세균의 동정실험(이론)
1. 실습제목 • 127
2. 실습개요(배경 및 원리) • 127
1) 장내세균의 배양배지 • 127
2) 장내세균의 기본적인 감별 동정순서 • 129
3) 생화학적 검사 • 129
부록 Ⅰ 임상미생물학 실습 요약(Summary)
부록 Ⅱ 배지(medium)
1) 배지를 제조할 때 일반적인 주의사항 • 149
2) 주요 배지 • 150
부록 Ⅲ 염색액 및 방법
1. Acid fast stain • 198
1) Kinyoun법(cold stain) • 198
2) Partial acid fast stain • 199
3) Ziehl-Neelsen법 • 199
4) Auramine-rhodamine항산성 염색 • 200
2. Capsule(협막) • 201
1) Hiss법 • 201
2) India ink(먹물)법 • 202
3. 편모(flagella)염색 • 202
xi
4. 그람염색(gram stain) • 203
1) Hucker변법 • 203
5. Lactophenol cotton blue(LPCB)염색 • 205
6. 이염색소체(異染色小體, metachromatic granule)염색 • 205
1) Albert 염색 • 206
2) Loeffler methylene blue염색 • 206
7. Potassium hydroxide(KOH)10%의 습윤표본(wet mount) 진균의 균사나 분아포자
의 검사 • 207
8. 아포(芽胞, spore)염색 • 207
1) Dorner법 • 207
2) Wirtz-Conkin법 • 208
9. Wayson염색(양극성 염색, bipolar staining) • 208
부록 Ⅳ 시약
1. Alcohol(알코올) 희석액 준비 • 209
1) Stock ethanol(ethl alcohol), C2H5OH, 95% • 209
2. Andrade indicator • 209
3. McFarland nephelometer 표준(standards) • 209
4. pH indicator • 211
5. 현미경 세척액(clearing solution for microscope) • 211
6. Oxgall과 담즙(bile) • 211
7. Potassium hydroxide 40%와 0.1N • 211
부록 Ⅴ 자동화 미생물 동정
1. Vitek system(BioMerieux Vitek)에 의한 동정 • 212
1) 개요 • 212
2) VITEK2 검사카드의 종류 • 213
3) VITEK2 검사카드 • 213
4) VITEK2를 이용한 검사과정 • 214
5) VITEK2항균제 감수성 결과의 해석. • 215
xii
2. MicroScan System 자동화 미생물 동정(MicroScan System) • 217
1) MicroScan WalkAway 40/96의 특징 • 217
2) MicroScan 균액접종 측정용 Panel • 218
3) 균액 접종 및 배양 • 219
4) 판독 • 219
3. MicroScan WalkAway plus • 219
1) 장비 개요 • 219
2) 측정 원리 • 220
3) Manual Reading • 220
부록 Ⅵ 미생물학에 흔히 사용하는 신용어와 구용어 • 221